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El desarrollo de métodos de amplificación de ADN por reacción en cadena de la polimerasa (PCR) ha permitido estudios moleculares de muestras de tejido fijado embebidas en parafina y de otro material archivado. Algunos métodos de fijación dañan el ADN y, por lo tanto, afectan negativamente el análisis de PCR posterior. Este estudio abordó el efecto del almacenamiento a corto y largo plazo (de 2 horas a 30 días) en una variedad de fijadores (formol BNF tamponado al 10%, etanol al 95%, acetona y OmniFix) antes de la inclusión en parafina. Probamos la capacidad de secciones de tejido preparadas para producir productos de amplificación de ADN que van de 268 a 1327 pb. Los resultados indicaron que los tejidos fijados durante 8 días en BNF pudieron amplificar fragmentos de ADN de 536 pb, pero muy poco de 989 pb; después de 30 días de fijación en BNF, solo se pudo amplificar un fragmento de 268 pb. Las muestras fijadas en OmniFix y acetona produjeron productos de 989 y 1327 pb, respectivamente, después de 8 días de fijación; ambos fijadores produjeron productos de amplificación de 989 pb tras 30 días de fijación. Los tejidos fijados en etanol al 95% durante hasta 30 días produjeron eficientemente fragmentos de amplificación de ADN de hasta 1327 pb de longitud. Los resultados proporcionan información importante para estudios prospectivos que involucran análisis de PCR de material archivado. Además, la fijación y el almacenamiento a largo plazo en etanol deberían ser particularmente útiles en áreas remotas donde la refrigeración o el procesamiento inmediato de muestras no están disponibles.
Greer et al. (Jue,) estudiaron esta cuestión.