Los puntos clave no están disponibles para este artículo en este momento.
Se estudiaron la división celular y el aumento celular para revelar el mecanismo de desarrollo de la tuberización de la papa utilizando sistemas de cultivo in vivo e in vitro. La distribución de las células en la fase S se visualizó mediante inmunotinción de bromodeoxicitosina (BrdU) incorporada. La mitosis se detectó en secciones teñidas con DAPI (4,6-di-amidinona-2-fenilindol) o azul de toluidina. El tiempo y la frecuencia de la división celular se determinaron mediante el conteo celular diario, y el aumento celular se dedujo de las mediciones de los diámetros celulares. Bajo condición in vivo, los brotes subterráneos laterales se desarrollaron en estolones debido a divisiones celulares transversales y elongación celular en la región apical de los brotes. Al inicio de la formación de tubérculos, la elongación de los estolones se detuvo y las células en la médula y la corteza se agrandaron y dividieron longitudinalmente, lo que resultó en la hinchazón de la punta del estolón. Cuando los tubérculos alcanzaron un diámetro de 0.8 cm, las divisiones longitudinales se habían detenido, pero se produjeron divisiones orientadas al azar y aumento celular en la región perimedular y continuaron hasta que los tubérculos alcanzaron su diámetro final. Los tubérculos in vitro se formaron a partir de brotes axilares en esquejes de un solo nodo cultivados en condiciones inducidas para la tuberización. De dejaron de crecer a un diámetro de 0.8 cm. La médula y la corteza estaban involucradas en la tuberización, tal como se encuentra durante la etapa temprana de la tuberización in vivo (< 0.8 cm de diámetro). Sin embargo, el mayor tamaño de los tubérculos in vivo se debe al desarrollo adicional de la región perimedular, que falta en condiciones in vitro.
Xu et al. (Sun,) estudiaron esta cuestión.
Synapse has enriched 5 closely related papers on similar clinical questions. Consider them for comparative context: