Mehrere Methoden zur Visualisierung der Hefevakuole ermöglichen die Bewertung ihrer Morphologie und Vererbung während des Zellzyklus.

Die Vakuole der Hefe Saccharomyces cerevisiae wurde mit drei nicht verwandten fluoreszierenden Farbstoffen visualisiert: FITC-Dextran, Quinacrin und einem endogenen Fluorophor, das in ade2-Hefen produziert wird. FITC-Dextran, das durch Endozytose in die Zellen gelangt, wurde zuvor als vitaler Farbstoff für Hefevakuolen entwickelt. Quinacrin, das durch Membranen diffundiert und sich in sauren Kompartimenten in Säugetierzellen anreichert, kann ebenfalls als Marker für Hefevakuolen verwendet werden. Ade2-Hefen reichern ein endogenes Fluorophor in ihren Vakuolen an. Mit diesen Farbstoffen wurden Hefen auf die Vakuolmorphologie während des Zellteilungszyklus untersucht. In sowohl der Mutterzelle als auch dem Spross war eine einzelne Vakuole die häufigste Morphologie in jeder Phase. Zwei oder mehr Vakuolen konnten auch in der Mutterzelle oder im Spross gefunden werden; jedoch war diese Morphologie nicht mit einem bestimmten Stadium des Zellteilungszyklus korreliert. Selbst kleine Sprosse (in der frühen S-Phase) enthielten oft eine kleine Vakuole. Bis der Spross die Hälfte des Durchmessers der Mutterzelle erreicht hatte, trug er fast immer eine Vakuole. Dieses Bild der Vakuolenteilung und -segregation unterscheidet sich von dem, was in synchronisierten Kulturen zu sehen ist. In ade2-Hefen erbt der Spross normalerweise einen erheblichen Teil des Inhalts seiner Vakuole von der Mutterzelle. Wir schlagen vor, dass die Vakuolensegregation durch vesikulären Verkehr zwischen der Mutterzelle und dem Spross erfolgt.