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L'analyse des acides gras phospholipidiques (PLFA) est largement utilisée pour mesurer la biomasse microbienne et la composition communautaire dans les sols et d'autres types d'échantillons environnementaux. Comme cela est généralement réalisé, l'analyse implique de nombreuses étapes et 1,5 à 3 jours sont nécessaires pour préparer un petit lot (c'est-à-dire 20 à 24 échantillons et témoins), selon l'équipement exact utilisé dans chaque laboratoire. La chromatographie en phase gazeuse (CG) ou la chromatographie en phase gazeuse-couplée à la spectrométrie de masse (CG-SM) est ensuite utilisée pour analyser les échantillons, nécessitant encore du temps pour obtenir les données. Nous avons développé une méthode pour préparer 96 échantillons de sol et témoins en 1,5 jour, une augmentation de 4 à 5 fois du débit. Toutes les étapes de séchage et de centrifugation se déroulent dans un évaporateur centrifuge. Les échantillons de sol dans des tubes à essai sont séchés toute la nuit, puis une extraction lipidique de Bligh-Dyer est effectuée. L'extrait est séché, dissous dans du chloroforme, puis chargé sur une plaque d'extraction en phase solide à 96 puits. Les phospholipides sont éludés dans des flacons en verre au format de 96 puits, séchés et transestérifiés. Les esters méthyliques d'acides gras résultants sont analysés par CG et quantifiés par rapport à un étalon interne. Le protocole à haut débit utilise des volumes de solvant beaucoup plus petits que le protocole traditionnel, ce qui, associé à l'utilisation du format à 96 puits, entraîne une préparation d'échantillons beaucoup plus rapide. Les concentrations de biomarqueurs de PLFA pour 10 sols différents étaient fortement corrélées, bien que non identiques, entre les deux protocoles. L'analyse multivariée des biomarqueurs PLFA a indiqué que les deux protocoles produisaient des motifs similaires pour les différents sols. Le protocole à haut débit pourrait être utile pour les laboratoires effectuant un grand nombre d'analyses de PLFA.
Buyer et al. (Fri,) ont étudié cette question.