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Les colorants fluorescents perméables à la membrane qui colorent l'ADN sont des réactifs utiles pour l'imagerie microscopique, car ils peuvent être introduits dans des cellules vivantes pour marquer l'ADN. Cependant, le nombre de ces colorants, tels que Hoechst 33342, est limité. Ici, nous montrons que le dodécaborate icosaédrique B12Br122–, un vecteur superchaotropic qui livre différents types de molécules dans les cellules, fonctionne comme un excellent vecteur pour les colorants fluorescents imperméables à la membrane. L'iodure de propidium (PI) et le 4′,6-diamidino-2-phenylindole (DAPI), colorants fluorescents di-cationiques et imperméables à la membrane qui colorent l'ADN, peuvent permeater les membranes cellulaires en présence de clusters de bore. Le vert de méthyle (MG), un colorant di-cationique utilisé dans la coloration histologique et fluorescente de l'ADN, a pénétré les membranes cellulaires en présence de clusters de bore. En revanche, les colorants fluorescents moncationiques perméables à la membrane, comme l'orange d'acridine et la pyronine Y, ont montré une fluorescence réduite dans les cellules en présence de clusters de bore. Les clusters de bore ne quenchent pas les colorants fluorescents di-cationiques dans l'eau in vitro mais ont des effets de quenching sur les colorants fluorescents moncationiques. Nous avons démontré que l'ajout de B12Br122– à des colorants fluorescents à ADN di-cationiques imperméables, tels que DAPI, PI et MG, qui ont été largement utilisés pendant de nombreuses années, confère une perméabilité membranaire pour introduire ces colorants dans des cellules vivantes.
Hirai et al. (Jeu,) ont étudié cette question.
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