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Un anticorps monoclonal IgM (HNK-1) a été produit contre un antigène membranaire de la lignée de cellules T cultivées, HSB-2. Par immunofluorescence indirecte, cet anticorps a réagi avec certaines lignées de cellules T humaines cultivées (HSB-2 et MOLT-4 mais pas MOLT-3), mais pas avec d'autres lignées d'origine des cellules B ou des cellules phagocytaires. HNK-1 a réagi avec 15,1 +/- 7,1 % des lymphocytes sanguins normaux, mais n'était pas réactif avec les monocytes, granulocytes, érythrocytes et plaquettes. Les cellules HNK-1+ séparées par un tri cellulaire activé par fluorescence (FACS) constituaient une population homogène de lymphocytes de taille moyenne avec un cytoplasme neutrophile abondant contenant des granules azurophiles. Les cellules HNK-1+ étaient non adhérentes, Ig- de surface, principalement réceptrices FcIgG+ et à la fois positives et négatives pour la capacité de rosettes des érythrocytes ovins (E) démontrable. Les suspensions cellulaires enrichies en cellules T formant des rosettes E et dépourvues de cellules réceptrices FcIgG+ contenaient peu (6 %) de cellules HNK-1+. La déplétion de cellules HNK-1+ des populations de cellules mononucléaires sanguines par lyse médiée par le complément (C) a fortement réduit l'activité NK contre les cellules cibles K-562 et l'activité lytique des cellules K contre les érythrocytes de poulet recouverts d'anticorps. Le traitement par HNK-1 seul ou C seul n'a pas affecté ces activités. Lorsque le FACS a été utilisé pour séparer les cellules HNK-1+ et HNK-1- de 6 individus, la population de cellules HNK-1+ contenait presque toute la fonction des cellules NK et K. L'anticorps monoclonal HNK-1 définit ainsi le premier antigène de différenciation montré comme étant exprimé sélectivement sur les cellules NK et K humaines.
Abo et al. (Mar,) ont étudié cette question.