Détection des staphylocoques producteurs de biofilm parmi différents isolats cliniques et sa relation avec la susceptibilité à la méthicilline

OBJECTIFS : Évaluer trois méthodes phénotypiques in vitro ; plaque de culture tissulaire, méthode en tube et agar au rouge Congo pour la détection de la formation de biofilm chez les staphylocoques et évaluer la relation entre la formation de biofilm et la résistance à la méthicilline et la résistance aux antimicrobiens. MÉTHODES : L'étude a inclus 150 isolats de staphylocoques. La détection du biofilm chez les staphylocoques a été réalisée en utilisant une plaque de culture tissulaire, la méthode en tube et l'agar au rouge Congo. RÉSULTATS : La plaque de culture tissulaire, la méthode en tube et l'agar au rouge Congo ont détecté respectivement 74 %, 42,7 % et 1,3 % de staphylocoques producteurs de biofilm. Les isolats de S. aureus étaient plus fréquemment des producteurs de biofilm (53,2 %) que les CONS (46,8 %). La production de biofilm dans les espèces de CONS était la plus élevée chez S. hemolyticus (57,7 %). La méthode en tube avait une sensibilité de 51,4 % et une spécificité de 82,1 %. Quant à l'agar au rouge Congo, la sensibilité était très faible (0,9 %), mais la spécificité était de 97,4 %. Les producteurs de biofilm provenaient principalement d'échantillons sanguins et ont été détectés dans des souches résistantes à la méthicilline 96/111 (86,5 %). Ils étaient résistants à la plupart des antibiotiques sauf à la vancomycine et à la linézolid. CONCLUSIONS : La plaque de culture tissulaire est une méthode plus quantitative et fiable pour la détection des staphylocoques producteurs de biofilm par rapport à la méthode en tube et à l'agar au rouge Congo. Ainsi, elle peut toujours être utilisée comme méthode de dépistage pour la détection du biofilm. La vancomycine et la linézolid sont les antibiotiques les plus sensibles parmi les staphylocoques producteurs de biofilm.