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Pour éclairer l'architecture du cytosquelette, nous avons utilisé le microscope à force atomique (AFM) pour mesurer l'élasticité, la viscosité viscoélastique et la plasticité des cellules L929. La réponse élastique initiale (module de Young d'environ 4 000 Pa) des cellules à une force appliquée a été suivie d'une compression lente du cytosquelette (tau 1/2 d'environ 10 s). Lorsque l'application de la force a été interrompue, le cytosquelette a subi une décompression partielle soudaine et une récupération lente et incomplète par la suite. Le rôle des éléments du cytosquelette dans la mécanique cellulaire a été évalué dans les mesures AFM réalisées sur des cellules traitées avec la cytochalasine D, le nocodazole ou le colcémide. Le traitement par cytochalasine D a réduit à la fois l'élasticité (environ 45 %) et la viscosité cytoplasmique (environ 65 %), tandis que les cellules traitées avec le nocodazole ou le colcémide ont présenté une augmentation marquée de l'élasticité (environ 100 %) et une légère augmentation de la viscosité (environ 15 %). Les mesures de force AFM ont également fourni des preuves que la membrane cellulaire et le cytosquelette sont mécaniquement couplés. Les cellules fortement adhérentes étaient plus rigides que les cellules faiblement attachées. De plus, les cellules réticulées avec du glutaraldéhyde, du 3, 3'-dithiobis sulfosuccinimidylpropionate (DTSSP) ou de la Concanavaline A étaient plus rigides que les cellules non traitées. Il est intéressant de noter que les cellules réticulées avec la Concanavaline A, mais pas avec le DTSSP, ont présenté des comportements plastiques qui pourraient refléter l'induction d'une réorganisation du cytosquelette par la Concanavaline A.
Wu et al. (Sat,) ont étudié cette question.
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