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Nous avons établi une procédure efficace pour la transformation de protoplastes et la régénération de plantes de riz (Oryza sativa L.) cultivars Nipponbare et Taipei 309 transgéniques fertiles. Les protoplastes ont été mélangés avec un gène de résistance à l'hygromycine exprimable par les plantes et traités avec 25% (p/v) de polyéthylène glycol. Une sélection stricte des colonies transformées a été appliquée aux protoplastes régénérés de 14 jours en présence de 95 micromolaires d'hygromycine B pendant 12 jours. Après sélection, 450 et 200 colonies résistantes ont été récupérées par million de protoplastes traités Taipei 309 et Nipponbare, respectivement. L'analyse par hybridation Southern des lignées cellulaires résistantes à l'hygromycine et des plantes régénérées a indiqué que 1 à 10 copies d'ADN transféré étaient intégrées à 1 à 4 loci du génome du riz. L'analyse de l'ADN par Southern suggère que l'ADN plasmidique introduit peut former des concatémères par recombinaison intermoléculaire avant intégration. Quatre plantes de riz transgéniques Taipei 309 et 39 Nipponbare ont été régénérées et cultivées jusqu'à maturité dans la serre. Deux plantes Taipei 309 et 35 Nipponbare ont produit des graines viables. Les caractéristiques agronomiques des plantes transgéniques Taipei 309 et l'hérédité du trait de résistance à l'hygromycine par la descendance des plantes transgéniques autofécondées ont été analysées.
Hayashimoto et al. (Sun,) ont étudié cette question.