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Eine Reihe von konditionalen Reporter-Mauslinien wurde etabliert, in denen spezifische Organellen mit fluoreszierenden Proteinen markiert wurden. Die subzelluläre Lokalisation und Intensität von 28 fluoreszierenden Fusionsprotein-Konstrukten wurden in Zelllinien untersucht, und 16 Konstrukte wurden ausgewählt, um Mauslinien zu generieren. Die Fusions-cDNAs wurden in das genomische Locus ROSA26 neben den Stoppsequenzen eingefügt, flankiert mit loxP, sodass fluoreszierende Proteine unter der ubiquitären ROSA26-transkriptionalen Maschinerie exprimiert wurden, wenn die loxP-Sequenzen mit Cre rekombiniert wurden. Die subzelluläre Lokalisation und Intensität des Fusionsprodukts in jeder Reporter-Mauslinie wurden untersucht, indem sie ubiquitär in E7.5-Embryonen exprimiert wurden. Zwölf Reporterlinien, die Zellkern, Mitochondrien, Golgi-Apparat, Plasmamembran, Mikrotubuli, Aktinfilamente und fokale Adhäsion markieren, wurden für die Live-Bildgebung als geeignet befunden. Deutliche Doppelmarkierungen wurden für Zellkern und Plasmamembran oder Golgi-Apparat demonstriert; klare Zeitraffer-Live-Bilder wurden für Zellkern und Plasmamembranen erhalten; die konditionale Expression wurde bei Lyn-Venus- und H2B-mCherry-Linien im Notocord mit Not-Cre bestätigt.
Abe et al. (Mon,) haben diese Frage untersucht.